Beclin-1、P62、LC3B在肺炎链球菌感染小鼠肺部中的表达变化

【摘要】 目的:探讨自噬相关蛋白Beclin-1、P62及微管相关蛋白轻链3B(microtubule-associatedproteinlightchain3B,LC3B)在肺炎链球菌感染小鼠肺部中的表达及意义。方法:生长至对数生长期的肺炎链球菌标准株D39用无菌PBS调节浓度为1.5×109CFU/mL,采用鼻滴的方法对50只SPF级雌性Balb/c鼠(6~8周,16~20g)进行处理,分别在感染后0、6、12、24、48h收集Balb/c小鼠支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolarlavagefluid,BALF)及肺组织,瑞氏-吉姆萨染色进行BALF细胞计数,HE染色观察肺组织病理学改变,Westernblot检测自噬相关蛋白Beclin-1、P62、LC3B在肺组织中的表达水平,免疫荧光观察LC3B在肺组织中的表达情况。结果:HE染色显示,小鼠鼻饲肺炎链球菌后12h及24h后肺组织内出现大量炎症细胞浸润。BALF中总细胞数量及中性粒细胞数量于感染后6h开始增高[(1.280±0.506)vs.(6.272±1.312),P=0.000;(0.000±0.000)vs.(3.456±1.308),P=0.000],在12h时达到高峰[(1.280±0.506)vs.(19.456±0.997),P=0.000;(0.000±0.000)vs.(15.040±1.012),P=0.000],48h后基本恢复正常水平[(1.280±0.506)vs.(3.520±0.933),P=0.005;(0.000±0.000)vs.(0.128±0.175),P=0.835]。Westernblot结果显示:自噬相关蛋白Beclin-1于感染后6h开始增加[(0.626±0.078)vs.(0.921±0.093),P=0.002],48h时达到最高水平[(0.626±0.078)vs.(1.884±0.158),P=0.000];自噬相关蛋白P62于感染后6h开始减少[(2.915±0.094)vs.(2.275±0.269),P=0.000],48h时降低至最低水平[(2.915±0.094)vs.(1.178±0.142),P=0.000];自噬相关蛋白LC3B于感染后12h开始升高[(0.747±0.197)vs.(1.429±0.318),P=0.006],24h时达到高峰[(0.747±0.197)vs.(2.002±0.451),P=0.000],48h后降低[(0.747±0.197)vs.(1.563±0.501),P=0.002]。免疫荧光显示:小鼠感染后12h与24h,肺组织中LC3B蛋白表达水平增加。结论:肺炎链球菌感染小鼠肺部后激活自噬的发生,且自噬在免疫调节过程中发挥着重要作用。[关键词]自噬;肺炎链球菌肺炎;Beclin-1;P62;微管相关蛋白轻链3B[中图分类号]R563.1[文献标志码]A[收稿日期]2019-02-27ChangesintheexpressionofBeclin-1,P62,andLC3BinthelungsofmiceinfectedwithStreptococcuspneumoniaeChenXiaoli,XingYu,LiaoLichao,ZhangWenfang,ZhangZhibo,DengShixiong(LaboratoryofForensicMedicineandBiomedicalInformation,TeachingandResearchSectionofForensicMedicine,CollegeofBasicMedicine,ChongqingMedicalUniversity)[Abstract]Objective:Toinvestigatetheexpressionofautophagy-relatedproteins,Beclin-1,P62,andmicrotubule-associatedproteinlightchain3B(LC3B),inthelungsofmiceinfectedwithStreptococcuspneumoniae.Methods:AstandardstrainofStreptococcuspneumoniae(D39)inthelogarithmicgrowthphasewasadjustedtoaconcentrationof1.5×109CFU/mLbysterilizedphosphate-bufferedsaline;thentheresultingsolutionwasadministeredto50specificpathogen-freefemaleBalb/cmiceaged6-8weeksandwithaweightof16-20gbyintranasalinstillation.Thebronchoalveolarlavagefluid(BALF)andlungtissuesoftheBalb/cmicewerecol-lectedat0h,6h,12h,24h,and48hafterinfection.CellsintheBALFwerecountedafterWright-Giemsastaining;pathologicalchangesinthelungtissueswereevaluatedafterhematoxylin-eosin(HE)staining.WesternblotwasusedtodeterminetheexpressionlevelsofautophagyrelatedproteinsBeclin-1,P62,andLC3Binthelungtissues.ImmunofluorescenceassaywasemployedtoobservetheexpressionofLC3Binthelungtissues.Results:HEstainingshowedmassiveinflammatorycellinfiltrationinthelungtissuesofthemiceat12hand24hafterintranasalinstillationofStreptococcuspneumoniae.ThetotalcellcountandneutrophilcountintheBALFincreasedsignificantlyat6hafterinfection作者介绍:陈晓丽,Email:chenxiaoli1992@163.com,研究方向:法医病理学。通信作者:邓世雄,Email:dengshixiong1963@163.com。优先出版:http://kns.cnki.net/kcms/detail/50.1046.R.20190402.0900.004.html(2019-04-03)基础研究DOI:10.13406/j.cnki.cyxb.002046746--重庆医科大学学报2019年第44卷第6期(JournalofChongqingMedicalUniversity2019.Vol.44No.6)肺炎链球菌是社区获得性肺炎的常见致病菌,可适应人体环境并寄宿于健康人体的上呼吸道[1]。肺炎链球菌易侵袭婴幼儿、老年人及免疫功能缺陷者,引起细菌性肺炎、菌血症、脑膜炎等相关疾病[2]。肺炎链球菌所致疾病是儿童死亡的主要原因,在儿童死因中占11%,全球每年约80万小于5岁的儿童死于肺炎链球菌所致感染[3]。肺炎链球菌疾病是宿主与细菌相互作用的结果,最终导致细胞和组织损伤,甚至宿主死亡[4]。自噬是细胞利用溶酶体降解自身受损细胞器及蛋白质,并维持细胞内环境稳定的过程,被分为巨自噬、微自噬和分子伴侣介导的自噬[5]。自噬在应激反应、神经退行性疾病、癌症、衰老及炎症中发挥着一定的作用[6]。研究显示,肺炎链球菌感染细胞模型中存在细胞自噬现象,其具体机制尚不完全清楚[7]。本研究采用鼻饲D39肺炎链球菌建立小鼠肺炎链球菌肺部感染模型,探讨自噬相关蛋白Beclin-1、P62和微管相关蛋白轻链3B(microtubule-associatedproteinlightchain3B,LC3B)是否参与肺炎链球菌感染小鼠肺部过程,以进一步阐释肺炎链球菌肺炎过程中自噬的调控机制,为肺炎链球菌肺炎的防治提供可靠的实验依据。1材料与方法1.1菌株肺炎链球菌标准株D39由重庆医科大学医学检验、临床检验诊断学教育部重点实验室惠赠。肺炎链球菌标准株D39于TSB液体培养基37℃、5%CO2恒温环境中生长至对数生长期,3500r/min离心10min,无菌PBS洗涤2次,调节菌液浓度至1.5×109CFU/mL。1.2实验动物重庆医科大学动物中心健康成年清洁级雌性Balb/c小鼠50只(6~8周龄,18~20g),动物许可证号[SYXK(渝)2017-0023]。饲养环境为SPF级动物寄养室,饲养温度为(22±2)℃,相对湿度(55±10)%,12h光照,自由饮水进食。1.3主要的试剂Anti-LC3A/B(WesternBlot)、Anti-p62购自万类生物;Anti-Beclin-1购自SantaCruz公司;Anti-LC3B(免疫荧光)购自CellSignaling公司;Anti-β-actin购自北京中杉金桥生物技术有限公司。1.4实验动物分组及处理50只SPF级雌性Balb/c麻醉状态下鼻腔滴注浓度为1.5×109CFU/mL的肺炎链球菌D3920μL,于感染后0、6、12、24、48h5个时间点各随机抽取小鼠10只,麻醉状态下,用1mL无菌PBS液进行支气管肺泡灌洗(回抽率>80%),提取支气管肺泡灌洗液(BALF),每个时间点5只;另外5只取出左肺上叶-80℃冻存,右肺上叶及右肺下叶固定在4%甲醛溶液中。1.5肺组织病理检查右肺上叶于4%多聚甲醛溶液中固定48h,梯度乙醇脱水后常规石蜡包埋,切片,HE染色后光学微镜下观察。参照文献方法[8]对肺组织炎症浸润程度进行评分。1.6BALF细胞计数BALF用4℃离心机3500r/min离心10min,取沉淀,用500μL无菌PBS混匀,进行细胞涂片及瑞氏-吉姆萨染色,在光学显微镜下进行总细胞及中性粒细胞计数。1.7Westernblot免疫印迹法检测自噬相关蛋白Beclin-1、P62、LC3B的表达常规提取左肺上叶总蛋白,BCA法测定蛋白浓度,以50μg总蛋白进行SDS-PAGE电泳,转膜0.5~1h,5%脱脂奶粉37℃恒温摇床封闭2h;一抗4℃孵育过夜;1%TBST洗膜3次,每次15min,二抗37℃恒温摇床孵育2h,1%TBST洗(6.272±1.312and3.456±1.308,respectively,bothP=0.000),reachedapeakat12h(19.456±0.997and15.040±1.012,respectively,bothP=0.000),anddecreasedtoanormallevelat48h(3.520±0.933and0.128±0.175,P=0.005and0.835,respectively),ascomparedwiththebaselinelevelsof1.280±0.506and0.000±0.000,respectively.Westernblotresultsshowedthattheautophagy-relatedproteinBeclin-1increasedfrom6hafterinfection(0.921±0.093,P=0.002)andreachedapeakat48h(1.884±0.158,P=0.000)comparedwiththebaselinelevelof0.626±0.078;theautophagy-relatedproteinP62decreasedfrom6hafterinfection(2.275±0.269,P=0.000)anddecreasedtoatroughlevelat48h(1.178±0.142,P=0.000)comparedwiththebaselinelevelof2.915±0.094;theautophagy-relatedproteinLC3Bincreasedfrom12hafterinfection(1.429±0.318,P=0.006),reachedapeakat24h(2.002±0.451,P=0.000),anddecreasedafter48h(1.563±0.501,P=0.002),ascomparedwiththebaselinelevelof0.747±0.197.ImmunofluorescenceassayshowedthattheexpressionofLC3Bproteinincreasedat12hand24hafterinfection.Conclusion:Afterinfectingthelungsofmice,Streptococcuspneumoniaeactivatesautophagy,whichplaysanimportantroleintheimmunemodulationinmice.[Keywords]autophagy;Streptococcuspneumoniae;Beclin-1;P62;microtubule-associatedprotein1lightchain3B747--重庆医科大学学报2019年第44卷第6期(JournalofChongqingMedicalUniversity2019.Vol.44No.6)膜3次,每次5min,ECL化学发光试剂盒显色。使用图像分析软件ImageQuantTL对光密度进行分析,最终结果以Beclin-1、P62、LC3B和内参β-actin的光密度比值表示。1.8免疫荧光法检测LC3B小鼠右下肺组织经4%多聚甲醛固定,10%、20%、30%蔗糖溶液梯度脱水,冰冻切片机切片。PBS溶液清洗3次,每次10min,荧光封闭液37℃恒温箱封闭30min;加入一抗工作液于4℃过夜,用PBS溶液代替一抗工作液设立阴性对照;37℃恒温箱复温1h,PBS溶液清洗3次,每次10min;加入二抗37℃恒温箱孵育1h,PBS溶液清洗3次,每次10min;DAPI染色5min,PBS清洗3次,每次10min。使用荧光显微镜观察LC3B荧光变化。1.9统计学处理采用SPSS17.0统计软件进行分析。所有数据以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组内两两比较采用LSD-t检验,检验水准α=0.05。2结果2.1肺组织病理检查鼻腔滴注1.5×109CFU/mL的肺炎链球菌D3920μL6h后,小鼠血管周围、支气管、细支气管周围出现炎症细胞浸润。随着时间的推移,炎症细胞浸润加重,肺泡间隔增厚,肺泡结构破坏,血管壁增厚(图1)。其肺组织炎症浸润程度评分如图2所示。2.2BALF中总细胞及中性粒细胞计数正常小鼠BALF中,主要以单核细胞为主。肺炎链球菌感染小鼠6h后,BALF中总细胞数量及中性粒细胞数量开始增高[(1.280±0.506)vs.(6.272±1.312),P=0.000;(0.000±0.000)vs.(3.456±1.308),P=0.000],在12h时达到高峰[(1.280±0.506)vs.(19.456±0.997),P=0.000;(0.000±0.000)vs.(15.040±1.012),P=0.000],48h后基本恢复正常水平图1小鼠鼻腔滴注浓度为1.5×109CFU/mLD3920μL后不同时间点肺组织病理切片注:,炎症细胞浸润0h6h12h24h48h200μm100μm50μm748--重庆医科大学学报2019年第44卷第6期(JournalofChongqingMedicalUniversity2019.Vol.44No.6)a:与0h组比较,P<0.05;b:与0h组比较,P<0.01;c:与0h比较,P<0.001图2小鼠鼻腔滴注浓度为1.5×109CFU/mLD3920μL后不同时间点肺组织病理评分(n=5)图3小鼠鼻腔滴注浓度为1.5×109CFU/mLD3920μL后不同时间点支气管肺泡灌洗液中总细胞及中性粒细胞计数情况(n=5)图4Westernblot检测不同时间点小鼠肺组织中Beclin-1、P62、LC3B蛋白的表达a:与0h组比较,P<0.05;b:与0h组比较,P<0.01;c:与0h比较,P<0.001图5小鼠鼻腔滴注浓度为1.5×109CFU/mLD3920μL后不同时间点小鼠肺组织中Beclin-1、P62、LC3B蛋白的表达(n=5)[(1.280±0.506)vs.(3.520±0.933),P=0.005;(0.000±0.000)vs.(0.128±0.175),P=0.835];如图3所示。2.4肺组织中Beclin-1、P62及LC3B蛋白表达水平的变化Westernblot结果显示:肺炎链球菌感染小鼠后,肺组织中Beclin-1蛋白逐渐增高,感染后48h仍处于较高水平[(0.626±0.078)vs.(1.884±0.158),P=0.000];肺组织中P62蛋白于感染后6h降低[(2.915±0.094)vs.(2.275±0.269),P=0.000],感染后12h较感染后0h组明显降低[(2.915±0.094)vs.(1.564±0.228),P=0.000],至48h仍处于较低水平[(2.915±0.094)vs.(1.178±0.142),P=0.000];肺组织中LC3B蛋白于感染后12h增高[(0.197±0.088)vs.(1.429±0.318),P=0.006],至24h达到高峰[(0.747±0.197)vs.(2.002±0.451),P=0.000],48h时较24h有所降低,但仍高于0h时水平[(0.747±0.197)vs.(1.563±0.501),P=0.002];如图4、图5所示。2.5免疫荧光法观察LC3B的表达LC3B在肺炎链球菌感染小鼠肺部后各个时间点均有表达,其中12h与24h较0h比较,LC3B的荧光信号明显增强,自噬细胞的数量增多[(3.333±1.528)%vs.(27.667±6.658)%,P=0.000;(3.333±1.528)%vs.(35.000±2.000)%,P=0.000)]。如图6、图7所示。3讨论肺炎链球菌是呼吸道内的常驻菌,在机体抵抗力下降时,特别是婴幼儿及年老体弱者,细菌更易侵袭致病,且预后大多不良[2]。肺炎链球菌是儿童呼吸道感染的常见致病菌,在全球小于5岁儿童中具有很高的致病率和致死率[3]。近年来因肺炎链球菌的耐药性逐渐增加、个体抵抗力低及诊治不及时等原因,最终引起的死亡成为目前医疗纠纷的案例之一。研究肺炎链球菌感染小鼠肺部模型,可为临床肺炎疾病的防治与法医学鉴定的病理诊断提供实验依据。肺炎链球菌可经呼吸进入下呼吸道,引起肺炎时间(h)61218243036424854bcca129630病理评分总细胞中性粒细胞时间(h)612182430364248540BALF中总细胞及中性粒细胞数量(104个/mL)0h6h12h24h48hBeclin-1P62LC3BLC3Aβ-actin60kD50kD47kD16kD14kD42kD时间(h)24481260Beclin-1的相对表达量2.52.01.51.00.50.0accc时间(h)24481260P62的相对表达量43210时间(h)24481260acbLC3B的相对表达量2.52.01.51.00.50.024201612840cccc749--重庆医科大学学报2019年第44卷第6期(JournalofChongqingMedicalUniversity2019.Vol.44No.6)a:与0h组比较,P<0.05;b:与0h组比较,P<0.01;c:与0h比较,P<0.001图7不同时间点自噬细胞百分比(n=3)注:,LC3B荧光信号增强图6免疫荧光观察不同时间点小鼠肺组织中LC3B蛋白的表达(400×)或中耳炎,也可经上皮细胞引起局部感染或菌血症[9]。本实验建立肺炎链球菌感染小鼠肺部模型,结果显示,肺组织及BALF中出现大量炎症细胞浸润,其中以中性粒细胞为主,提示小鼠肺部出现炎症反应,与Gomez等[10]肺炎链球菌感染小鼠肺部模型研究结果一致。当细菌入侵机体呼吸道,机体可通过不同途径清除入侵的病原菌,呼吸道上皮细胞与肺泡巨噬细胞分别可以通过纤毛运动、分泌黏液和吞噬作用清除部分病原菌,并在协同作用下合成趋化因子及其他细胞因子激活中性粒细胞,使中性粒细胞向感染部位聚集[9-12]。本实验发现,在感染后12h与24h,肺泡间隔增厚,肺泡结构破坏,血管壁明显增厚,支气管、细支气管管腔内大量炎症细胞聚集,其中以中性粒细胞为主,提示在此期间,肺部炎症浸润最明显,中性粒细胞在清除肺炎链球菌过程中发挥着重要作用。最近研究发现,真核细胞的自噬体具有清除病原微生物的功能,是上皮细胞、巨噬细胞、中性粒细胞清除病原微生物的机制之一,参与炎症的发生并在炎症反应过程中具有重要作用[13-15]。自噬是一种保守的细胞内降解途径,可通过双层膜将自身受损细胞器、蛋白质以及入侵病原菌包裹运输至溶酶体降解,维持细胞内环境稳定,包括自噬双层膜的形成、自噬体的形成、自噬体的运输与融合以及自噬体的降解4个阶段[16-17]。细胞吞噬细菌后,一方面,自噬时间(h)24481260accb403020100白噬细胞百分比(%)LC3BDAPIMerge0h6h12h24h48h20μm750--重庆医科大学学报2019年第44卷第6期(JournalofChongqingMedicalUniversity2019.Vol.44No.6)相关蛋白可促进包裹细菌的吞噬体与溶酶体结合,另一方面,自噬相关蛋白可捕获细胞内游离的细菌形成自噬体,并运输至溶酶体与溶酶体结合[18]。Beclin-1属于自噬相关蛋白家族,与Ⅲ类磷脂酰肌醇3激酶(ClassⅢPI3K)相结合构成自噬双层膜,并作为信号分子促进其他自噬相关蛋白的聚集,是参与调节自噬形成起始阶段的关键蛋白[19-21]。P62是自噬相关蛋白之一,在自噬形成过程中,P62作为底物不断被消耗,因而P62是反映自噬活性的关键蛋白[22]。LC3B是自噬特异性蛋白参与并调节自噬体的形成,是反映自噬活性的标志性蛋白[23]。本研究通过鼻腔滴注肺炎链球菌,建立肺炎链球菌感染小鼠肺部模型,结果显示,在感染后12、24及48h肺组织中自噬相关蛋白Beclin-1及LC3B的表达明显升高,P62的表达明显降低,与Li[13]和Ullah[24]等结果一致,提示肺炎链球菌可激活小鼠肺组织发生自噬,自噬活动在感染后12~48h期间最明显。相关研究表明,肺炎链球菌可通过抑制PI3K/AKT/mTOR通路从而激活A549细胞发生自噬,而通过药物抑制自噬后,细胞对细菌的清除减少,提示自噬活动能增强细胞对病原菌的清除[13]。综上所述,肺炎链球菌感染小鼠肺部后,可激活肺部发生自噬,而自噬的激活可能促进机体对细菌的清除,从而改善肺组织的损伤。而自噬在肺炎链球菌肺炎中具体的作用机制如何,需要进一步研究。参考文献[1]vanderPollT,OpalSM.Pathogenesis,treatment,andpreventionofpneumococcalpneumonia[J].Lancet,2009,374(9700):1543-1556.[2]BogaertD,deGrootR,HermansPWM.Streptococcuspneumoniaecolonisation:thekeytopneumococcaldisease[J].LancetInfectDis,2004,4(3):144-154.[3]O`BrienKL,WolfsonLJ,WattJP,etal.BurdenofdiseasecausedbyStreptococcuspneumoniaeinchildrenyoungerthan5years:globalestimates[J].Lancet,2009,374(9693):893-902.[4]HirstRA,KadiogluA,O`callaghanC,etal.Theroleofpneumolysininpneumococcalpneumoniaandmeningitis[J].ClinExpImmunol,2004,138(2):195-201.[5]CzajaMJ,DingWX,DonohueTMJr,etal.Functionsofautophagyinnormalanddiseasedliver[J].Autophagy,2013,9(8):1131-1158.[6]NighotP,MaT.Roleofautophagyintheregulationofepithelialcelljunctions[J].TissueBarriers,2016,4(3):e1171284.[7]OgawaM,MatsudaR,TakadaN,etal.MolecularmechanismsofStreptococcuspneumoniae-targetedautophagyviapneumolysin,Golgi-residentRab41,andNedd4-1-mediatedK63-linkedubiquitination[J].CellMicrobiol,2018,20(8):e12846.[8]BergeronY,OuelletN,DeslauriersAM,etal.Cytokinekineticsandotherhostfactorsinresponsetopneu-mococcalpulmonaryinfectioninmice[J].InfectImmun,1998,66(3):912-922.[9]DockrellDH,WhyteMKB,MitchellTJ.Pneumococcalpneumoni-a:mechanismsofinfectionandresolution[J].Chest,2012,142(2):482-491.[10]GomezJC,DangH,MartinJR,etal.Nrf2ModulatesHostDefenseduringStreptococcuspneumoniaePneumoniainMice[J].JImmunol,2016,197(7):2864-2879.[11]BalsR,HiemstraPS.Innateimmunityinthelung:howepithelialcellsfightagainstrespiratorypathogens[J].EurRespirJ,2004,23(2):327-333.[12]FarnworthSL,HendersonNC,MackinnonAC,etal.Galectin-3reducestheseverityofpneumococcalpneumoniabyaugmentingneu-trophilfunction[J].AmJPathol,2008,172(2):395-405.[13]LiP,ShiJ,HeQ,etal.Streptococcuspneumoniaeinducesau-tophagythroughtheinhibitionofthePI3K-I/Akt/mTORpathwayandROShypergenerationinA549cells[J].PLoSOne,2015,10(3):e0122753.[14]YuanK,HuangC,FoxJ,etal.AutophagyplaysanessentialroleintheclearanceofPseudomonasaeruginosabyalveolarmacrophages[J].JCellSci,2012,125(Pt2):507-515.[15]CharguiA,CesaroA,MimounaS,etal.SubversionofautophagyinadherentinvasiveEscherichiacoli-infectedneutrophilsinducesin-flammationandcelldeath[J].PLoSOne,2012,7(12):e51727.[16]ZhouXJ,ZhangH.Autophagyinimmunity:Implicationsinetiol-ogyofautoimmune/autoinflammatorydiseases[J].Autophagy,2012,8(9):1286-1299.[17]CuiJ,JinS,WangRF.TheBECN1-USP19axisplaysaroleinthecrosstalkbetweenautophagyandantiviralimmuneresponses[J].Autophagy,2016,12(7):1210-1211.[18]LevineB,MizushimaN,VirginHW.Autophagyinimmunityandinflammation[J].Nature,2011,469(7330):323-335.[19]PattingreS,EspertL,Biard-PiechaczykM,etal.RegulationofmacroautophagybymTORandBeclin1complexes[J].Biochimie,2008,90(2):313-323.[20]WirawanE,LippensS,VandenBergheT,etal.Beclin1:aroleinmembranedynamicsandbeyond[J].Autophagy,2012,8(1):6-17.[21]AuAK,AnejaRK,BayirH,etal.AutophagyBiomarkersBeclin1andp62areIncreasedinCerebrospinalFluidafterTraumaticBrainInjury[J].NeurocritCare,2017,26(3):348-355.[22]SchmitzKJ,AdemiC,BertramS,etal.Prognosticrelevanceofautophagy-relatedmarkersLC3,p62/sequestosome1,Beclin-1andULK1incolorectalcance,patientswithrespecttoKRASmutationalstatus[J].WorldJSurgOncol,2016,14(1):189.[23]KlionskyDJ,AbdallaFC,AbeliovichH,etal.Guidelinesfortheuseandinterpretationofassaysformonitoringautophagy[J].Autophagy,2012,8(4):445-544.[24]UllahI,RitchieND,EvansTJ.Theinterrelationshipbetweenphagocytosis,autophagyandformationofneutrophilextracellulartrapsfollowinginfectionofhumanneutrophilsbyStreptococcuspneumoniae[J].InnateImmun,2017,23(5):413-423.(责任编辑:唐秋姗)751--